Pull-down实验是利用亲和标签系统从复杂蛋白混合物中特异性地富集目标蛋白及其潜在互作伙伴的经典技术。其核心原理为：将目标蛋白与亲和标签（如Halo、His、GST等）融合表达，借助标签与固相介质之间的高亲和结合，将目标蛋白"锚定"在树脂上，从而从裂解液或蛋白溶液中捕获与目标蛋白存在物理相互作用的蛋白质。捕获的蛋白复合物经洗脱后，可通过SDS-PAGE银染、Western Blot或液相色谱-串联质谱（LC-MS/MS）进行鉴定，实现对互作蛋白的发现与验证。

本公司提供GST与Halo两种Pull-down技术服务：

GST Pull-down系统：大肠杆菌表达，成本经济、产量稳定，经典互作验证方案

Halo Pull-down系统：真核无细胞表达，天然构象，专攻跨膜/毒性等难表达蛋白，省时2-3周。

根据您的蛋白特性和研究目标，灵活匹配最优方案。

原理简介

服务优势

特异性捕获：通过Halo/GST标签与对应亲和介质的高效结合，从复杂样品中精准富集目标蛋白及其互作复合物，非特异性结合低。
适用性广：Halo系统擅长跨膜蛋白、毒性蛋白等难表达靶标；GST系统适用于可溶性蛋白的高效表达，两种体系互补，覆盖不同类型蛋白需求。
流程高效：Halo系统采用真核无细胞表达，省去转化、破碎、纯化等繁琐步骤，节省2-3周实验周期；GST系统原核表达，操作简便、产量稳定。
数据可靠：标签特异性抗体检测，有效避免抗体重链/轻链信号干扰；配套Input及阴性对照，确保结果真实可信。
灵活对接下游：捕获的蛋白复合物可直接用于SDS-PAGE、Western Blot或LC-MS/MS鉴定，也可无缝衔接EMSA等下游功能实验，满足不同研究需求。

服务流程

接受订单及样品

诱饵蛋白与猎物蛋白原核表达载体的构建

诱饵蛋白与猎物蛋白的诱导表达

诱饵蛋白与猎物蛋白的纯化

Pull-down技术蛋白互作分析

WB进一步鉴定互作蛋白表达

客户提供

构建表达纯化靶蛋白与相关诱饵蛋白（也可选择由金开瑞构建），（点对点验证）纯化蛋⽩诱饵不少于0.5mg，猎物不少于1mg，（NTA或TE溶，不含变性剂）保证蛋⽩活性，注明浓度、标签及⼤⼩。

由金开瑞构建：

细胞：3x10^7个细胞，离心后收集细胞沉淀，沉淀体积约为80-100μL，干冰运输。

动物组织：不少于0.5g，新鲜取材，⼲冰寄送；

植物组织：不少于1g，新鲜幼嫩组织，⼲冰寄送。

检测用一抗（也可选择由金开瑞提供）

最终交付

提供完整的实验报告， SDS-PAGE 以及WB结果

服务说明

服务名称	服务内容	交付内容及标准	服务周期(工作日)
GST pull-down-WB	pull down前检测	WB检测1个诱饵和1个猎物蛋白	16
	SDS-PAGE考染	考染检测1个诱饵和1个猎物蛋白
	pull down富集	对照组和实验组各富集一次
	pull down后检测	WB检测1个诱饵和1个猎物的实验后对照组、实验组、input组
GST pull-down-MS	pulldown前检测	WB检测1个诱饵蛋白	31
	SDS-PAGE考染	考染检测1个诱饵蛋白
	pulldown富集	对照组和实验组各富集一次
	pulldown后检测	WB检测1个诱饵的实验后对照组、实验组、input组
	质谱鉴定	含银染及2组（实验组和对照组）质谱鉴定分析

Halo pull down技术优势

我们采用真核无细胞蛋白表达系统，蛋白构象更接近天然状态，数据更可靠；省去转化、破碎、纯化等繁琐步骤，节省2-3周实验周期。该系统尤其擅长跨膜蛋白、毒性蛋白等难表达靶标的高效获取。

服务名称	步骤	内容	交付内容	周期
Halo pull-down	无细胞表达+纯化	采用真核来源的无细胞表达系统进行蛋白表达	蛋白表达评估报告	1周
Halo pull-down	Pull Down	细胞裂解；目的蛋白和总蛋白孵育；洗脱与目的蛋白结合的蛋白。	SDS-PAGE银染	2周
Halo pull-down-WB	验证已知蛋白:WB检测	WB 检测1个诱饵和 1个猎物的实验后对照组、实验组、input 组	WB 结果	1-2周
Halo pull-down-MS	未知蛋白：质谱检测	将洗脱的蛋白进行质谱鉴定质谱结果	质谱结果	2-3周

案例展示

在线课堂

GST pull down实验不会做？看过来，手把手教你！！！（四）

GST pull down 实验不会做？看过来手把手教你（三）

GST pull down实验不会做？看过来手把手教你！！！（二）

GST pull down实验不会做？看过来手把手教你！！！（一）

相关资源

1、 GST pull down实验的应用

● 蛋白质相互作用研究：GST pull-down可用于研究蛋白质间的相互作用，帮助揭示蛋白质互作网络和信号传导途径。通过将目标蛋白质与GST融合，可以通过GST pull-down实验来寻找与其相互作用的蛋白质。

● 信号转导研究：GST pull-down可用于研究信号转导通路中的蛋白质相互作用，例如研究激酶与底物之间的相互作用、信号传导复合物的组装等。

● 蛋白质结构和功能研究：GST pull-down可以用于确定蛋白质结构域的结合伙伴，帮助研究蛋白质的功能和结构-功能关系。

● 细胞周期和细胞凋亡研究：GST pull-down可以用于研究细胞周期调控蛋白、凋亡相关蛋白以及相关信号通路中的蛋白质相互作用。

● 药物研发和筛选：GST pull-down可以用于筛选潜在的药物靶点和药物分子与目标蛋白质的相互作用。

● 癌症研究：GST pull-down在癌症相关蛋白质相互作用的研究中也有广泛应用，有助于揭示癌症发展和治疗靶点。

总体而言，GST pull-down技术在蛋白质相互作用研究、信号转导、蛋白质结构和功能研究以及药物研发等领域中发挥着重要作用，为研究人员提供了一种有效的工具来探索蛋白质间的相互作用和功能。

2、 GST pull down实验步骤中的注意事项：

● 优化结合条件：在进行GST pull down实验之前，可以尝试不同的结合缓冲液和结合条件，以提高目标蛋白质与GST-融合蛋白的结合效率和特异性。这可以包括优化pH值、离子强度、温度和结合时间等因素。

● 防止非特异性结合：非特异性结合是GST pull down实验中常见的问题之一。为了减少非特异性结合的干扰，可以添加非特异性蛋白（如牛血清白蛋白，BSA）或具有竞争性结合的肽段作为阻断剂。

● 添加特定的酶抑制剂：如果在GST pull down实验中发现蛋白质-蛋白质相互作用受到特定酶的影响，可以在实验过程中添加相应的酶抑制剂，以阻止酶的活性和干扰蛋白质-蛋白质结合。

● 利用质谱分析鉴定交互蛋白：在进行GST pull down实验后，可以使用质谱分析来鉴定与GST-融合蛋白特异性结合的交互蛋白。质谱分析可以提供蛋白质的身份和结合的肽段信息，进一步确认蛋白质-蛋白质相互作用的可靠性。

● 结合其他实验方法：为了更全面地了解蛋白质-蛋白质相互作用，可以结合其他实验方法进行进一步的验证。

3、哪些技术可以与GST pull down结合使用，从而进一步验证和深入研究通过GST pull-down实验获得的蛋白质-蛋白质相互作用？

▶ 共沉淀实验（Co-immunoprecipitation, Co-IP）
Co-IP是一种常用的方法，用于验证蛋白质-蛋白质相互作用的特异性。在Co-IP实验中，使用特异性抗体来共沉淀与目标蛋白质特异性结合的蛋白质。通过与GST pull down实验结合使用，可以验证GST pull down结果中的交互蛋白是否真正与目标蛋白质相互作用。

举例：假设在GST pull down实验中鉴定到一个与GST-融合蛋白特异性结合的未知蛋白X。通过Co-IP实验，可以使用特异性抗体来共沉淀蛋白X，并进一步验证其与目标蛋白质的相互作用。

▶ 荧光共振能量转移（Fluorescence Resonance Energy Transfer, FRET）
FRET是一种测量蛋白质之间的相互作用的技术。它基于能量从一个荧光染料（供体）转移到另一个附近的荧光染料（受体）的原理。通过将供体和受体蛋白质标记上适当的荧光染料，可以直接观察和量化它们之间的相互作用。

举例：在GST pull down实验中，可以通过将供体和受体标记在目标蛋白质和其交互蛋白上，来验证它们之间的相互作用。当这两个蛋白质相互作用时，荧光能量将从供体转移到受体，产生FRET信号。

▶ 质谱分析（Mass Spectrometry, MS）
质谱分析是一种用于鉴定蛋白质和肽段的技术，可以用于验证GST pull down实验中交互蛋白的身份。通过将共沉淀的蛋白质复合物分离并进行质谱分析，可以鉴定和确认GST pull down实验中特异性结合的蛋白质。

举例：在GST pull down实验中，可以将共沉淀的蛋白质复合物经过SDS-PAGE分离，然后进行质谱分析。质谱仪可以将分离的蛋白质逐个离子化，并根据它们的质量-电荷比进行分析。通过与蛋白质数据库的比对，可以确定这些蛋白质的身份，并验证其与目标蛋白质的相互作用。

▶ 功能性实验
除了上述的直接相互作用验证方法外，还可以进行功能性实验来进一步研究蛋白质-蛋白质相互作用的生物学意义。这些实验可以包括细胞信号转导、转录调控、蛋白质定位和功能研究等。

举例：通过GST pull down实验鉴定到一个与GST-融合蛋白特异性结合的转录因子。可以利用功能性实验，如基因表达分析、染色质免疫沉淀（ChIP）实验等，研究该转录因子对基因表达的调控作用，以及其在特定生物学过程中的功能。

综上所述，结合其他实验方法如共沉淀实验、荧光共振能量转移、质谱分析和功能性实验，可以进一步验证和深入研究通过GST pull down实验获得的蛋白质-蛋白质相互作用。这些方法提供了多重角度的验证和功能研究，从而更全面地了解蛋白质之间的相互作用和其在细胞过程中的功能。

4、 GST pull-down实验中常见的探针类型

● 抗体探针：使用针对目标蛋白质的特异性抗体作为探针。这些抗体可以与GST-融合蛋白质特异性结合，并通过抗体的检测标记（如荧光标记或酶标记）来检测结合事件。

● 蛋白质结合域探针：使用与GST结合的蛋白质结合域作为探针。GST结合域可以与目标蛋白质特异性结合，并通过检测与GST结合的结合域来检测结合事件。

● 标记化小分子探针：使用标记化的小分子化合物作为探针。这些小分子化合物可以选择性地结合目标蛋白质，并通过标记来检测结合事件。

● 细胞裂解物探针：使用来自细胞裂解物的蛋白质混合物作为探针。这些蛋白质混合物中可能包含与GST-融合蛋白质特异性结合的蛋白质，可以通过免疫印迹或质谱分析等方法检测结合事件。

这些探针类型可以根据实验需求和目标蛋白质的特性来选择。选择合适的探针类型可以提供对特异性结合的定量和定位信息，进一步揭示蛋白质相互作用及其功能。

▶ 酵母单杂交	▶ EMSA	▶ 双荧光素酶报告系统
▶ RNA pull-down	▶ CO-IP	▶ RIP-qPCR
▶ DNA pull-down	▶ ChIP-qPCR	▶ 酵母双杂交
▶ CUT&Tag

GST / Halo pull down

服务介绍