免疫亲和法提取外泌体是如何实现的?
免疫亲和法提取外泌体,核心是利用抗原-抗体特异性结合的原理,从复杂样本中精准捕获表面带有特定标志物的外泌体。
该方法的实现主要分为3个核心步骤,整体流程具有高特异性、低杂质的特点。
1、关键试剂与材料准备
特异性抗体选择:这是方法的核心。需根据外泌体表面的特征标志物选择抗体,常见标志物包括CD9、CD63、CD81(通用标志物),或针对特定细胞来源的标志物(如上皮细胞来源的EpCAM)。
抗体固定化:将选择好的抗体通过化学偶联或物理吸附的方式,固定在固相载体表面。常用载体有磁珠、微球、色谱柱填料或酶标板。

2、样本与抗体的孵育结合
将处理后的样本(如血清、血浆、细胞培养液)与固定有抗体的固相载体混合,在适宜的温度(通常为4℃或室温)和时间下孵育。
孵育过程中,样本中外泌体表面的标志物会与载体上的特异性抗体发生特异性结合,形成“载体-抗体-外泌体”复合物,而其他杂质(如游离蛋白、脂蛋白)则不会结合。
3、洗涤与洗脱纯化
洗涤步骤:使用缓冲液(如PBS)多次冲洗固相载体,将未结合的杂质彻底去除,只保留结合在载体上的外泌体复合物。
洗脱步骤:加入特定的洗脱液(如低pH缓冲液、高盐溶液或含竞争性抗原的溶液),破坏抗体与外泌体标志物之间的结合力,使外泌体从载体上脱离并进入洗脱液。
最后对洗脱液进行离心或过滤处理,即可得到高纯度的外泌体。
最新动态
-
10.16
当Cq值不能直接比:荧光定量PCR中被误用的六个假设
-
10.16
噬菌体展示的工程学真相:库容、遗传漂移与淘洗压力之间的三角关系
-
10.16
CUT&Tag的真实门槛:从"一万个细胞起"到"可信图谱"之间那些没人写在protocol里的失败
-
10.16
ChIP-seq实验设计的六道关口:从交联参数到生物学结论之间的断层带
-
10.15
酵母双杂交筛库的质量控制:从诱饵可用性到阳性克隆归一化的实战判据
-
10.15
酵母质粒小提的性能边界:破壁效率、纯度诊断与下游用途匹配
-
10.15
凝胶电泳迁移实验的判据体系:从泳道表达到单变量排查
-
10.15
细胞凋亡检测的证据链设计: 象限、时间窗与假阳性来源
-
10.14
LCA实验技术,连接酶介导的核酸扩增体系与生命周期评估方法学的双轨实践
-
10.14
荧光定量检测技术 | 定量体系的工程实现、多重探针设计与跨平台归一化


