慢病毒构建稳转细胞系
稳转细胞系是指将目标基因表达元件(如过表达元件、干扰shRNA元件)整合进宿主基因组中,并可以随着细胞的传代稳定的表达该基因。在基因工程和细胞生物学领域,构建稳定的细胞系常用于研究基因功能以及进行高通量筛选等实验。
慢病毒感染是构建稳转细胞系的常用方法之一,这种方法相对于其他转染技术来说具有较高的稳定性和转染效率。利用慢病毒构建稳转细胞系的具体步骤进行了介绍。
慢病毒构建稳转细胞系的基本流程与一般的病毒包装及转染类似,但需要注意以下几点:
选择合适的载体:为了构建稳定的细胞系,通常会选择将目标基因表达元件整合到质粒或病毒载体中。慢病毒载体一般是利用HIV病毒衍生出的,并利用其基因组的逆转录过程将外源DNA整合到宿主细胞基因组中。
选择合适的包装细胞:需要利用带有慢病毒载体、表达逆转录酶和外皮蛋白的包装细胞(例如HEK293T细胞)来制备病毒颗粒。
病毒包装:将载有目标基因表达元件的慢病毒载体与包装细胞共同分别转染至细胞培养中,待病毒包装完成后可通过超速离心等方式收集HIV-1载体颗粒。
细胞转染:将制备好的病毒颗粒加入目标细胞培养物中,经过适当的筛选后可以获得稳转细胞系。
需要注意的是,慢病毒构建稳转细胞系虽然具有较高的稳定性和转染效率,但也存在一些常见的问题,如病毒剧毒性、细胞不同步等,这些问题需要在实验设计中加以考虑。
最新动态
-
10.20
多克隆抗体定制中,佐剂的选择需考虑哪些因素?不同佐剂的免疫效果与动物应激反应有何差异?
-
10.20
未脱盐的DNA合成产物会对后续实验产生哪些干扰?
-
10.20
基因合成的片段若需进行甲基化修饰,能否通过化学合成直接实现?
-
10.17
酵母双杂交与高通量测序技术结合,在蛋白质相互作用研究中能实现哪些新的突破和应用?
-
10.17
如何提高双荧光实验结果的可重复性和可靠性?
-
10.17
基因合成的“错误率”通常以“每kb错误碱基数”衡量,不同应用场景对错误率的可接受标准是什么?
-
10.17
DNA合成产物的退火效率如何通过非变性PAGE或动态光散射DLS验证?退火不完全会对后续实验造成什么影响?
-
10.17
多克隆抗体定制的纯化方法有哪些?不同方法的纯度与特异性差异如何?
-
10.16
双荧光实验技术有哪些最新的研究进展和发展趋势?
-
10.16
在病毒学研究中,酵母双杂交系统对于研究病毒与宿主细胞之间的蛋白质相互作用有哪些优势?