酵母双杂交自激活原理
酵母双杂交(Yeast Two-Hybrid)是蛋白质相互作用研究技术。其自激活原理基于以下步骤:
表达载体构建:首先,需要构建两个表达载体,一个携带目标蛋白的DNA结合域(DBD,DNA-Binding Domain),另一个携带潜在相互作用蛋白的激活域(AD,Activation Domain)。
制备酵母菌株:使用不含特定蛋白的酵母菌株,如Saccharomyces cerevisiae。
转化表达载体:将DBD和AD载体分别导入酵母菌中,并确保它们能够进行正常的转录和翻译。
蛋白质相互作用检测:如果目标蛋白与潜在相互作用蛋白发生相互作用,则DBD与AD结合,形成功能完整的转录因子,激活报告基因的表达。这通常依赖于报告基因的启动子区域与转录因子结合,从而产生可检测的信号。
报告基因检测:检测报告基因的表达水平,例如利用荧光素酶或β-半乳糖苷酶的荧光或颜色变化。
自激活是指目标蛋白自身能够在无潜在相互作用蛋白存在的情况下与AD结合,从而导致报告基因的表达。为了减少自激活的影响,常常需要进行对照实验组,包括测定目标蛋白与DBD载体的结合以及目标蛋白与AD载体的结合。只有在目标蛋白与DBD和AD载体都能够结合时,才可以判断目标蛋白与潜在相互作用蛋白发生了相互作用。
不同蛋白质的自激活特性可能存在差异,因此在进行酵母双杂交实验时需要谨慎设计和解读结果。
最新动态
-
01.07
EMSA电泳结束后,探针的显影/检测方法有哪些?不同检测方法的灵敏度和操作难度有何差异?
-
01.06
CoIP实验怎么选择合适的诱饵蛋白抗体?
-
01.06
EMSA实验中,荧光标记、生物素标记、放射性标记探针各缺点是什么?
-
01.06
基因合成中引入限制性内切酶酶切位点的原则是什么?如何避免酶切位点在基因内部出现?
-
01.06
银染试剂盒的适用样品类型有哪些?能否用于核酸凝胶的染色?
-
01.06
引物设计中GC含量的最优范围是多少?过高或过低会导致什么问题?
-
12.31
实验前,RNA探针需要进行变性复性处理吗?处理条件如何设置?
-
12.31
DNA合成的脱保护步骤如何操作?不同保护基团的脱保护条件有何差异?
-
12.31
双荧光素酶检测试剂盒的核心检测原理是什么?两种荧光素酶的发光机制有何不同?
-
12.31
基因合成前需要提交哪些关键信息给服务商?基因序列的上下游同源臂设计有什么要求?


