银染的灵敏度能达到多少?适合检测哪些浓度范围的蛋白样品?
银染是聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)中常用的高灵敏度蛋白染色方法,其灵敏度和适用的蛋白浓度范围有明确的区间,同时受染色方案、凝胶类型和蛋白性质的影响。
一、银染的灵敏度
银染的灵敏度远高于考马斯亮蓝染色,常规银染的检测下限为1–10ng蛋白,优化后的银染方案(如荧光银染、敏化银染)灵敏度可进一步提升至0.1–1ng蛋白。
这个灵敏度差异主要源于染色原理:银染是通过银离子(Ag⁺)与蛋白中的羧基、氨基等基团结合,再经还原剂还原为金属银颗粒,形成肉眼可见的棕黑色或黄色条带,银颗粒的沉积具有放大效应,因此能检测到极低含量的蛋白。
与之对比,考马斯亮蓝染色的检测下限约为50–100ng蛋白,银染的灵敏度是其10–100倍。
二、适合检测的蛋白样品浓度范围
银染适合检测低丰度蛋白样品,对应的上样浓度范围需结合凝胶上样体积和蛋白分子量综合判断,常规SDS-PAGE中的适用范围如下:
1、总蛋白样品
对于细胞裂解液、组织提取物等复杂总蛋白样品,银染适合检测浓度在0.1–10μg/mL的样品,上样体积通常为10–20μL,对应的上样总蛋白量约为1–200ng。若蛋白浓度过高,条带会出现弥散、拖尾,甚至形成黑色沉淀,掩盖低丰度蛋白的信号。
2、纯化蛋白样品
对于纯化的单一蛋白,银染的适用浓度范围更宽,可检测0.01–1μg/mL的样品。例如分子量为50kDa的纯化蛋白,上样10μL浓度为0.01μg/mL的样品,对应蛋白量约0.1ng,仍可清晰显色。

三、注意事项
银染的灵敏度受操作步骤影响极大,如固定液的成分、银染液的浓度、显影时间等,操作不当会导致背景偏高,降低实际检测灵敏度。
银染存在一定的假阳性,部分核酸或多糖也可能被染色,因此用于蛋白检测时,建议先对样品进行脱核酸处理。
最新动态
-
12.23
DNA合成产物的常用纯化方法有哪些?脱盐、PAGE、HPLC纯化的适用范围分别是什么?
-
12.23
双荧光素酶检测的操作顺序是什么?为什么要先检测报告荧光素酶再检测内参?
-
12.23
密码子偏好性在基因合成中是如何体现的?不同宿主的密码子优化策略有何差异?
-
12.23
银染的灵敏度能达到多少?适合检测哪些浓度范围的蛋白样品?
-
12.23
引物的长度、碱基组成对合成效率和后续实验效果有何影响?
-
12.22
大规模DNA合成与实验室小规模合成的技术要求有何不同?
-
12.22
银染后出现背景过深的原因有哪些?如何通过调整操作步骤优化?
-
12.22
定制化引物(如带接头、甲基化修饰)的合成周期一般多久?
-
12.19
CoIP实验如何选择合适的诱饵蛋白抗体?
-
12.18
酵母质粒小提试剂盒与大肠杆菌质粒小提的差异是什么?


