双分子荧光素酶互补实验
双分子荧光素酶(BiFC)互补实验是一种用于研究蛋白质相互作用的方法。它基于蛋白质相互作用导致荧光素酶两个互补片段的重组,并产生可观察的荧光信号。

BiFC实验的基本原理如下:
构建表达载体:将感兴趣的两个蛋白质与荧光素酶的互补片段分别融合,构建两个表达载体。一般选择荧光素酶的N端(N-terminal)和C端(C-terminal)进行融合。
转染细胞:将上述构建好的表达载体分别转染到待检测蛋白质的宿主细胞中。
重组荧光素酶互补:如果两个融合蛋白质发生相互作用,在细胞内会使荧光素酶的N端和C端靠近并重组成完整的酶结构,从而产生荧光信号。
荧光信号观察:通过荧光显微镜或其他荧光成像技术观察细胞中的荧光信号。如果存在荧光信号,表明两个融合蛋白质发生了相互作用。
BiFC实验的优点是可以在活细胞中直接观察到蛋白质相互作用的位置和时机,并可定量分析其强度。然而,需要注意的是,BiFC实验仅能提供蛋白质相互作用的直接证据,不能确定其具体作用模式(如结合强度、动力学等)。因此,在进行BiFC实验时,还需要结合其他方法进行详细的研究和分析。
双分子荧光素酶互补实验是一种常用的蛋白质相互作用研究方法,可以帮助科学家探索蛋白质间的相互作用关系,并进一步了解其在细胞功能调控中的作用。

最新动态
-
11.14
硫酸铵沉淀法纯化的多克隆抗体,纯度通常能达到多少?怎么提升纯度?
-
11.14
含重复序列的siRNA合成通过分段合成和重叠区设计解决?
-
11.14
酶促合成法相比传统化学合成法,在准确性、合成长度上有哪些优势?
-
11.13
疏水抗原制备的多克隆抗体,纯化时易出现沉淀,需调整哪些缓冲液条件?
-
11.13
琼脂糖凝胶电泳能否初步判断合成基因的完整性?如何通过电泳结果排除“片段断裂”或“非特异性条带”问题?
-
11.13
进行基因序列设计时,需要提前规避哪些风险序列?
-
11.11
难表达或毒性抗原的多克隆抗体定制,有哪些替代方案?
-
11.11
CAR-T细胞治疗中,CAR基因的合成有哪些特殊要求?
-
11.11
植物基因工程用于农杆菌转化的目的基因DNA合成,需在序列设计上考虑哪些植物特异性因素?
-
11.11
多克隆抗体定制中,能否通过“预免疫”减少抗载体抗体的产生?


