细胞功能实验检测方法
细胞功能实验是研究细胞生物学行为、信号通路调控、药物效应及疾病机制的重要手段。根据研究目的不同，细胞功能实验涵盖多个维度，主要包括增殖、凋亡、周期、迁移、侵袭、黏附、吞噬、分泌、代谢、干性、分化等。以下是对各类核心细胞功能检测方法的系统性描述（不使用表格）：
一、细胞增殖能力检测
细胞增殖反映其生长与分裂活性。常用方法包括：
CCK-8法：利用水溶性四唑盐WST-8被活细胞线粒体脱氢酶还原为橙黄色甲臜产物，其吸光度与活细胞数成正比，操作简便、无放射性。
MTT/XTT法：原理类似，但MTT产物不溶于水，需有机溶剂溶解，步骤较繁琐；XTT则为水溶性改良版。
EdU掺入法：通过将5-乙炔基-2’-脱氧尿苷（EdU）掺入新合成DNA，利用“点击化学”反应标记增殖细胞，可实现高灵敏度、单细胞水平的定量，优于传统BrdU法（无需DNA变性）。
克隆形成实验：将低密度细胞接种培养7–14天，染色后计数形成的克隆数，反映单个细胞长期增殖潜能，常用于评估放化疗敏感性或干细胞特性。
二、细胞凋亡检测
凋亡是程序性死亡过程，可通过多种标志物识别：
Annexin V-FITC/PI双染流式法：Annexin V结合外翻的磷脂酰丝氨酸（早期凋亡标志），碘化丙啶（PI）标记膜破损的晚期凋亡或坏死细胞，可区分活细胞、早期凋亡、晚期凋亡与坏死。
Caspase活性检测：通过荧光底物（如DEVD-pNA）检测Caspase-3/7等关键执行蛋白酶的激活程度。
TUNEL染色：标记DNA断裂末端，适用于组织切片或贴壁细胞的原位凋亡检测。
Western blot检测凋亡相关蛋白：如cleaved PARP、cleaved Caspase-3、Bax/Bcl-2比值等。
三、细胞周期分析
通过DNA含量判断细胞所处周期阶段（G0/G1、S、G2/M）：
PI染色流式细胞术：细胞固定透化后用碘化丙啶染色DNA，流式检测荧光强度分布，配合ModFit等软件拟合各周期比例。
可结合BrdU标记S期细胞，实现更精细的动态分析。
四、细胞迁移与侵袭能力检测
迁移指细胞定向移动，侵袭则需穿透基底膜，模拟肿瘤转移过程：
划痕实验（Wound healing assay）：在单层细胞上制造“划痕”，观察一定时间内细胞向空隙迁移的能力，操作简单但受增殖干扰。
Transwell迁移/侵袭实验：使用含微孔膜的Transwell小室。迁移实验仅铺细胞于上室；侵袭实验则在膜上预铺Matrigel基质胶模拟细胞外基质。下室加入趋化因子（如FBS），培养后固定染色计数穿膜细胞数。
实时细胞分析系统（如xCELLigence RTCA）：通过电极阻抗变化无标记、实时监测细胞迁移或侵袭动力学。
五、细胞黏附能力检测
评估细胞与基质或其他细胞的黏附强度：
将细胞接种于包被有纤连蛋白、层粘连蛋白或胶原的板中，孵育后洗去未黏附细胞，染色或CCK-8定量残留细胞。
可用于研究整合素功能、炎症反应或转移潜能。
六、吞噬功能检测（主要针对免疫细胞）
荧光微球或细菌吞噬实验：将FITC标记的乳胶微球或灭活细菌与巨噬细胞共孵育，流式或荧光显微镜检测胞内荧光信号。
需设置4℃对照以排除表面吸附。
七、细胞因子与分泌蛋白检测
ELISA：定量检测培养上清中特定细胞因子（如IL-6、TNF-α、VEGF）浓度。
Luminex多重检测：同时检测数十种分泌蛋白，高通量适用于免疫谱分析。
Western blot或质谱：用于非靶向性分泌组（secretome）研究。
八、细胞代谢功能检测
糖酵解与线粒体呼吸：使用Seahorse XF分析仪实时检测细胞外酸化率（ECAR）和氧耗率（OCR），分别反映糖酵解和氧化磷酸化水平。
ATP含量测定：荧光或化学发光法评估细胞能量状态。
ROS检测：DCFH-DA探针被活性氧氧化后发出绿色荧光，用于评估氧化应激。
九、干细胞干性与分化潜能检测
成球实验（Sphere formation）：在无血清悬浮条件下培养，形成肿瘤球或神经球，反映自我更新能力。
多向分化诱导：如间充质干细胞诱导为成骨、成脂、成软骨细胞，通过特异性染色（茜素红、油红O、阿利新蓝）验证。
干性标志物检测：如Oct4、Sox2、Nanog的mRNA或蛋白表达。
十、其他功能性检测
钙离子流检测：使用Fluo-4等荧光探针监测细胞内Ca²⁺动态，用于研究G蛋白偶联受体或离子通道激活。
报告基因实验：将启动子或响应元件连接荧光素酶，评估信号通路活性（如NF-κB、Wnt、STAT3）。
细胞功能实验需根据科学问题选择合适的方法，并注重实验设计的严谨性（如设置阴性/阳性对照、重复次数、时间点优化）。多种方法常联合使用，以从不同角度交叉验证细胞行为的改变，从而全面揭示其生物学意义。
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