怎么利用DNA pulldown研究DNA与蛋白质的相互作用?

信息来源:金开瑞 作者:genecreate 发布时间:2025-07-23 15:39:27

    DNA pulldown 是研究 DNA 与蛋白质相互作用的经典体外实验技术,其核心原理是:将生物素标记的特定 DNA 片段(如启动子、增强子等感兴趣的序列)作为 “诱饵”,与蛋白质样品孵育后,通过生物素 - 链霉亲和素的高特异性结合,将与 DNA 结合的蛋白质 “拉下来”,再通过检测(如质谱、Western blot 等)鉴定或验证这些相互作用的蛋白质。

一、DNA pulldown 的核心步骤

    1、DNA 探针制备

        设计并合成目标 DNA 片段(如基因启动子区域、特定顺式作用元件等),通过 PCR 或化学合成法引入生物素标记(通常标记在 DNA 的 5’端或 3’端)。

        同时制备阴性对照探针(如随机 DNA 序列、目标 DNA 片段的突变体,用于排除非特异性结合)。

        纯化 DNA 探针,去除未标记的 DNA 或杂质,保证探针纯度(避免干扰后续结合反应)。

    2、蛋白质样品制备

        提取细胞或组织的总蛋白质(常用 RIPA 裂解液,含蛋白酶抑制剂以防止蛋白质降解),或使用体外表达的重组蛋白质。

        离心去除细胞碎片,保留上清(含可溶性蛋白质),并测定蛋白质浓度(保证样品浓度适宜,避免浓度过高导致非特异性结合增加)。

    3、孵育与结合

        将生物素标记的 DNA 探针与蛋白质样品在结合缓冲液(通常含低盐、牛血清白蛋白 BSA 或脱脂奶粉,减少非特异性结合)中孵育(温度多为室温或 4℃,孵育时间根据实验优化,一般 1-2 小时),使 DNA 与特异性结合的蛋白质充分结合。

    4、捕获结合的蛋白质复合物
        向反应体系中加入链霉亲和素磁珠(或琼脂糖珠),利用生物素与链霉亲和素的强亲和力(解离常数约 10⁻¹⁵ M),使 “DNA - 蛋白质复合物” 被磁珠捕获。

        温和振荡孵育(如室温 30 分钟),确保磁珠与复合物充分结合。

    5、洗涤去除非特异性结合

        用洗涤缓冲液(可通过调整盐浓度、去污剂浓度优化,如含 0.1%-0.5% Triton X-100 的缓冲液)多次洗涤磁珠,去除未结合或非特异性结合的蛋白质(洗涤步骤是减少背景的关键,需平衡 “洗去杂质” 和 “保留特异性结合”)。

    6、洗脱与检测

        用洗脱缓冲液(如高盐缓冲液、含变性剂的缓冲液,或加热变性)将结合在 DNA 上的蛋白质从磁珠上洗脱下来。

        洗脱后的蛋白质通过以下方法检测:

            质谱分析:鉴定未知的 DNA 结合蛋白(适用于筛选新的相互作用蛋白);

            Western blot:验证已知蛋白质与目标 DNA 的结合(需用特异性抗体检测);

            银染 / 考马斯亮蓝染色:观察洗脱的蛋白质条带,对比实验组与阴性对照,初步判断是否存在特异性结合蛋白。

 

二、DNA pulldown 的关键应用场景

    1、筛选未知的 DNA 结合蛋白

    例如,研究某基因启动子区域的调控蛋白时,通过 DNA pulldown 结合质谱,可发现哪些转录因子或调控蛋白能与该启动子结合。

    2、验证已知蛋白质与 DNA 的相互作用

    若已知某蛋白质可能结合特定 DNA 序列(如通过预测或芯片数据推测),可通过 DNA pulldown 结合 Western blot 验证其直接相互作用。

    3、分析 DNA 序列突变对蛋白质结合的影响

    对比野生型 DNA 与突变型 DNA 探针的 pulldown 结果,判断特定碱基突变是否影响蛋白质的结合(如启动子突变是否导致转录因子结合能力下降)。

 

三、实验设计的核心注意事项

    1、严格设置对照

        阴性对照:随机 DNA 探针、未标记的目标 DNA 探针(竞争性抑制结合,验证特异性)、无 DNA 探针的空白组(排除磁珠对蛋白质的非特异性吸附)。

        阳性对照:若已知某蛋白质与目标 DNA 结合,可将其作为阳性对照,验证实验体系的有效性。

    2、优化实验条件

        DNA 探针浓度:过高可能导致非特异性结合增加,过低可能结合效率不足,需预实验优化。

        洗涤缓冲液:盐浓度过高可能洗去特异性结合的蛋白质,过低则背景偏高;可逐步提高盐浓度(如 100 mM→300 mM NaCl)梯度洗涤。

        孵育时间:过短可能结合不充分,过长可能增加非特异性结合,需根据蛋白质特性调整。

    3、避免干扰因素

        蛋白质样品需新鲜制备,避免反复冻融(防止蛋白质变性)。

        磁珠需提前用结合缓冲液平衡,去除保存液中的杂质(如叠氮钠,可能抑制蛋白质活性)。

    DNA pulldown 技术通过 “DNA 诱饵捕获蛋白质” 的思路,能直接在体外验证或筛选 DNA 与蛋白质的相互作用,具有操作简便、特异性高的特点。但需注意实验条件的优化和对照设置,以排除非特异性结合,确保结果的可靠性。该技术常与质谱、Western blot 等方法结合,广泛应用于基因表达调控、表观遗传等研究领域。




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